小鼠肝微粒體作為體外藥物代謝研究的關鍵工具,廣泛應用于藥代動力學、毒性篩選及酶抑制評估等領域。其活性高度依賴制備質量、儲存條件與實驗操作規范。若處理不當,易出現代謝活性低、數據重復性差、非特異性結合高等問題,嚴重影響實驗結論可靠性。科學識別并精準應對
小鼠肝微粒體出現的常見問題,是保障體外代謝研究質量的核心。

一、代謝反應速率過低或無轉化
原因分析:微粒體失活、NADPH再生系統失效、凍融次數過多或蛋白濃度不足。
解決方法:
嚴格冷鏈管理:微粒體應于–80℃保存,避免反復凍融(建議分裝使用);
驗證NADPH再生系統新鮮配制(葡萄糖-6-磷酸、G6PDH等組分未降解);
用陽性對照底物(如睪酮測CYP3A11、非那西丁測CYP1A2)驗證批次活性;
測定微粒體蛋白濃度(Bradford法),確保反應體系中蛋白量一致(通常0.1–1mg/mL)。
二、實驗重復性差(CV>15%)
原因分析:加樣誤差、孵育時間/溫度不均、微粒體混懸不勻或酶抑制劑殘留。
解決方法:
使用多通道移液器或自動化工作站減少人為誤差;
孵育過程使用恒溫振蕩水浴(37℃±0.5℃),確保反應管受熱均勻;
使用前將微粒體冰上超聲5–10秒(低功率),形成均一懸液;
實驗器皿清洗,避免洗滌劑或有機溶劑殘留抑制酶活。
三、非特異性結合嚴重,回收率偏低
原因分析:化合物吸附于管壁或微粒體蛋白,尤其高脂溶性(logP>3)分子易損失。
解決方法:
使用低吸附耗材(如硅化玻璃管或聚丙烯低結合管);
在反應體系中加入0.1%–0.5%BSA(牛血清白蛋白)競爭結合位點;
設置“零時間點”和“無NADPH”對照,校正非代謝損失;
優化終止方法(如乙腈沉淀蛋白后立即離心),減少吸附時間。
四、背景干擾或假陽性信號
原因分析:溶劑濃度過高(如DMSO>1%)、雜質干擾LC-MS檢測或內源性物質干擾。
解決方法:
控制終體系DMSO≤0.5%,并設溶劑對照組;
使用高純度試劑,避免輔料含熒光或離子化干擾物;
采用同位素內標法(SIL-IS)校正基質效應;
必要時進行空白微粒體+底物對照,排除非酶促降解。